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磷酸化抗體使用需要注意哪些事項(xiàng)

閱讀:197      發(fā)布時(shí)間:2025-4-10
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 使用磷酸化抗體時(shí),需要注意以下事項(xiàng)以確保實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性和可靠性:
樣本處理:
加入抑制劑:在裂解緩沖液(lysis buffer)中必須加入蛋白酶抑制劑和適量的磷酸酶抑制劑,以抑制組織或細(xì)胞裂解過(guò)程中釋放的內(nèi)源性蛋白磷酸酶,防止磷酸化蛋白去磷酸化,從而維持蛋白質(zhì)的磷酸化狀態(tài)。
確保裂解:建議使用裂解液裂解結(jié)合超聲處理,確保細(xì)胞充分裂解并剪切染色質(zhì)DNA。超聲處理時(shí)應(yīng)保持低溫,避免蛋白降解。
新鮮樣本:使用新鮮制備的樣本,避免反復(fù)凍融,以減少磷酸基團(tuán)的降解。
抗體孵育:
低溫孵育:一抗孵育最好在4°C下進(jìn)行,并過(guò)夜孵育,以確??贵w與目的蛋白充分結(jié)合。低溫有助于維持抗體與抗原的物理吸附,防止高溫下抗原脫落。
稀釋液選擇:根據(jù)產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)推薦的稀釋液稀釋抗體,通常建議使用含5%牛血清白蛋白(BSA)的TBST稀釋液,而非含脫脂牛奶的TBST,因?yàn)槊撝D讨锌赡芎辛姿峄鞍?,影響?shí)驗(yàn)結(jié)果。
洗滌條件:
洗滌液選擇:推薦使用TBST作為洗滌液,相對(duì)于PBST,TBST能提供更強(qiáng)的信號(hào)。
洗滌次數(shù)和時(shí)間:洗滌次數(shù)和時(shí)間需要優(yōu)化,以避免信號(hào)減弱或背景增加。通常建議一抗和二抗孵育后,用TBST洗膜3次,每次5分鐘。
封閉條件:
封閉劑選擇:雖然網(wǎng)絡(luò)上流傳磷酸化抗體不適于用牛奶封閉的說(shuō)法,但使用實(shí)驗(yàn)級(jí)脫脂牛奶進(jìn)行室溫封閉1小時(shí)是有效的,且有助于降低非特異性結(jié)合。
封閉時(shí)間:避免膜封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng),以免掩蓋抗原表位,阻止抗體結(jié)合。
對(duì)照設(shè)置:
陽(yáng)性對(duì)照:設(shè)置合適的陽(yáng)性對(duì)照,以確認(rèn)抗體檢測(cè)到的特異性信號(hào)。
總蛋白和內(nèi)參對(duì)照:除了檢測(cè)磷酸化蛋白外,還應(yīng)檢測(cè)該蛋白的總表達(dá)量,以及使用普通內(nèi)參作為體系對(duì)照,保證上樣量一致。
實(shí)驗(yàn)環(huán)境:
低溫環(huán)境:在整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,除超聲處理外,應(yīng)保持低溫環(huán)境,以防止磷酸化蛋白在室溫下被蛋白磷酸酶降解。
結(jié)果分析:
分子量比對(duì):在壓片后,根據(jù)marker比對(duì)條帶的分子量,確認(rèn)檢測(cè)到的條帶是否正確。
曝光時(shí)間:優(yōu)化曝光或壓片時(shí)間,以避免背景過(guò)深或條帶過(guò)淺。
抗體質(zhì)量:
選擇高質(zhì)量抗體:確保使用的磷酸化抗體質(zhì)量可靠,并嚴(yán)格按照抗體說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。

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