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游離脂肪酸含量測試盒
閱讀:251 發(fā)布時間:2020-11-12
游離脂肪酸(free fatty acid,FFA)含量測定試劑盒說明書
微量法 100T/48S
注意:正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義:
FFA 既是脂肪水解的產物,又是脂肪合成的底物。FFA 的濃度與脂類代謝、糖代謝、內分泌
功能有關,也可反映食物貯藏中的品質變化。
測定原理:
在弱酸性條件下,FFA 與銅鹽反應生成銅皂,在 715nm 處有特征吸收峰,在一定范圍內游
離脂肪酸含量與顯色程度呈線性關系。
自備儀器和用品:
研缽、臺式離心機、震蕩儀、可見分光光度計/酶標儀、微量石英比色皿/96 孔板。
試劑組成和配制:
試劑一:液體×1 瓶,4℃保存。
試劑二:液體×1 瓶,4℃保存。
試劑三:液體×1 瓶,4℃保存。
樣品中 FFA 提?。?/span>
1、 血液:將所取血液,室溫靜置 1 h 后,于 4 ℃ 離心機 3500 rpm 離心 15min,取上清 0.1mL,
加 1mL 試劑一,震蕩提取 3h,8000g,4℃離心 10min,取上清液待測。
2、 組織:組織用蒸餾水沖洗干凈后,用吸水紙吸取表面水分,搗碎后稱取約 0.1g 轉移至離
心管,按照組織質量(g):試劑一體積(mL)為 1:5~10 的比例加入試劑一,震蕩提取 3h,
8000g,4℃離心 10min,取上清液待測。
3、 細菌、真菌:按照細胞數量(104 個):試劑一體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建
議 500 萬細胞加入 1mL 試劑一)加入試劑一,冰浴超聲波破碎細胞(功率 300w,超聲
2 秒,間隔 3 秒,總時間 3min);震蕩提取 3h,然后 8000g,4℃,離心 10min,取上清
待測。
測定操作:
1. 分光光度計/酶標儀預熱 30 min,調節(jié)波長到 715 nm。
2. 空白管:取上清液 0.4mL,加 0.2mL 試劑二,充分震蕩 5min,室溫靜置 5min,取上層
200μ L 于微量石英比色皿/96 孔板,調零。
3. 測定管:取上清液 0.4mL,加 0.2mL 試劑三,充分震蕩 5min,室溫靜置 5min,取上層
200μ L 于微量石英比色皿/96 孔板,測定吸光值,記為 A。
FFA 含量計算:
a. 使用微量石英比色皿測定的計算公式如下
標準曲線:y=0.0075 x+ 0.0055,R
2
=0.994
1. 血液中 FFA 含量計算
FFA(nmol/mL)=(A-0.0055)÷0.0075×V 反總÷V 樣=1333×(A-0.0055)
2. 組織中 FFA 含量計算
(1)按樣本蛋白濃度計算
FFA(nmol/mg prot)= (A-0.0055)÷0.0075×V 反總÷(V 樣×Cpr)=133×(A-0.0055)÷Cpr
(2)按樣本質量計算
FFA(nmol/g)= (A-0.0055)÷0.0075×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×W)=133×(A-0.0055)÷W
3. 按細胞數量計算
FFA(nmol/104
cell)= (A-0.0055)÷0.0075×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×細胞數量)
=133×(A-0.0055)÷細胞數量
V 樣總:上清液總體積,1 mL;V 反總:反應總體積,0.4mL;V 樣:加入樣本體積,0.4mL;
W:樣本鮮重,g;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL
b.使用 96 孔板測定的計算公式如下
標準曲線:y=0.0038 x+ 0.0055,R
2
=0.994
1. 血液中 FFA 含量計算
FFA(nmol/mL)= (A-0.0055)÷0.0038×V 反總÷V 樣= 2666×(A-0.0055)
2. 組織中 FFA 含量計算
(1)按樣本蛋白濃度計算
FFA(nmol /mg prot)= (A-0.0055)÷0.0038×V 反總÷(V 樣×Cpr)
= 266×(A-0.0055)÷Cpr
(2)按樣本質量計算
FFA(nmol /g)= (A-0.0055)÷0.0038×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×W)
= 266×(A-0.0055)÷W
3. 按細胞數量計算
FFA(nmol /104
cell)= (A-0.0055)÷0.0038×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×細胞數量)
=266×(A-0.0055)÷細胞數量
V 樣總:上清液總體積,1 mL;V 反總:反應總體積,0.4mL;V 樣:加入樣本體積,0.4mL;
W:樣本鮮重,g;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL
注意事項:
1. 蛋白含量不可直接用提取的上清液直接測定,可用蒸餾水或緩沖液或生理鹽水選用本公
司的 BCA 法蛋白含量測定試劑盒。
2. di檢出限為 0.8 mmol/L。