糖原含量試劑盒 糖代謝 返回列表頁

糖原含量試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

糖原含量試劑盒 糖代謝

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

糖原是由葡萄糖單位構(gòu)成的高分子多糖，是糖的主要的儲存形式之一，主要貯存在肝和肌肉中作為備用能量，分別稱為肝糖原和肌糖原。肝糖原可調(diào)節(jié)血糖濃度，當血糖升高時可在肝臟合成糖原，血糖降低時，肝糖原則分解為葡萄糖以補充血糖。因此，肝糖原對維持血糖的相對平衡十分重要。肌糖原是肌肉中糖的儲存形式,在劇烈運動消耗大量血糖時，肌糖原不能直接分解成血糖，必須先分解產(chǎn)生乳酸,隨血液循環(huán)到肝臟,通過糖異生轉(zhuǎn)變?yōu)楦翁窃蚱咸烟恰?/span>

測定原理：

蒽酮法。利用強jian性提取液提取糖原，在強suan性條件下利用蒽酮顯色劑測定糖原含量。

組成：

試劑一：0.1mg/ml 的葡萄糖標準液 10ml×1 瓶，4℃保存；

自備儀器和用品：

可見分光光度計、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1ml 玻璃比色皿、濃硫酸（不允許快遞）和蒸餾水。

試劑的組成和配制：

提取液：液體 50ml×1 瓶，4℃保存；

試劑一：0.1mg/ml 的葡萄糖標準液 10ml×1 瓶，4℃保存；試劑二：粉劑×1 瓶， 4℃保存；

糖原提取：

1﹑細胞或細菌：收集 500~1000 萬細菌或細胞到離心管內(nèi)，離心后棄上清；加入 0.75ml 提取液超聲波破碎細菌或細胞（功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；轉(zhuǎn)移至 10ml 試管中，95℃水浴 20min（蓋緊，防止水分散失），隔 5min 振搖試管 1 次，使充分混勻；取出試管冷卻后，用蒸餾水定容到 5ml，混勻，8000g 25℃離心 10min，取上清液待測。

2﹑組織：稱取 0.1~0.2g 樣品，加入 0.75ml 提取液充分勻漿；轉(zhuǎn)移至 10ml 試管中；95℃水浴 20min（蓋緊，防止水分散失），隔 5min 振搖試管 1 次，使充分混勻；待組織全部溶解后，取出試管冷卻后，用蒸餾水定容到 5ml，混勻，8000g 25℃離心 10min，取上清液待測。

步驟和加樣表:

1、分光光度計預熱 30min 以上，調(diào)節(jié)波長至 620nm，蒸餾水調(diào)零。

2、調(diào)節(jié)水浴鍋至 95℃。

3、試劑二工作液的配制：在試劑二中倒入 10ml 蒸餾水，緩慢倒入 40ml 濃硫酸，充分溶解混勻后使用；用不完的試劑 4℃保存一周；

4、加樣表（在EP 管中反應）：

混勻，95℃水浴 10min（蓋緊，防止水分散失），冷卻，于 620nm 波長處，以蒸餾水調(diào)零，分別讀取空白管、標準管和測定管吸光度，分別記為A1、A2 和A3。

注意：1、空白管和標準管只要測一次。

2、如果A3-A1 大于 2，需要將樣本用蒸餾水稀釋，計算公式中乘以相應稀釋倍數(shù)。

糖原含量的計算：

1、按照樣本質(zhì)量計算

糖原（mg/g 鮮重）＝1.11×(C 標準×V1)×(A3-A1)÷(A2-A1)÷(W×V1÷V2)= 0.555×(A3-A1)÷（A2-A1)÷W

2、按照蛋白質(zhì)含量計算

糖原(mg/mg prot)＝1.11×(C 標準×V1)×(A3-A1) ÷(A2-A1) ÷(V1×Cpr)=0.111×(A3-A1) ÷（A2-A1) ÷Cpr

1.11：是此法測得葡萄糖含量換算為糖原含量的常數(shù)，即 111ug 糖原用蒽酮試劑顯色相當于 100ug 葡萄糖用蒽酮所試劑顯示的顏色；C 標準管：標準管濃度，0.1mg/ml；V1：加入反應體系中糖原提取液體積，0.25ml； V2：加入提取液體積，5ml； Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本鮮重，g。

注意：最di檢測限為 10ng/g 鮮重或 0.1ng/ mg prot。

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