透射電鏡常用的50-100 kV電子束來說,樣品的厚度控制在10~100 nm為宜。由于電鏡產(chǎn)生的電子束穿透能力很弱,需要把標(biāo)本切成厚度小于0.1 µm以下的薄片才適用,這種薄片稱為超薄切片(Ultrathin sectioning)。常用的超薄切片厚度是50-70 nm,也可進(jìn)行冷凍超薄切片。
超薄切片技術(shù)是為透射電子顯微鏡觀察提供薄樣品的專門技術(shù),研究材料類、生物類樣品的基本技術(shù),尤其是觀察細(xì)胞、組織、器官等的超微結(jié)構(gòu)以及亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)常用的技術(shù)。也是電鏡細(xì)胞化學(xué)、免疫電鏡等技術(shù)的關(guān)鍵性技術(shù)。它在生物學(xué)的發(fā)展過程中占據(jù)重要的地位,目前各種細(xì)胞、組織的超微結(jié)構(gòu)知識(shí)幾乎都是由它提供的。
冷凍超薄切片機(jī) Leica EM UC7
取材→固定→脫水→包埋(滲透、包埋、聚合)→超薄切片→電子染色(生物類)
取材→清洗→包埋(滲透、包埋、聚合)→超薄切片→電子染色(材料類)
生物樣品超薄切片要求:
(2)切片厚度50-100 nm為宜:太薄反差低;太厚反差好,但結(jié)構(gòu)重疊,電子束不能穿透;
(3)切片應(yīng)耐電子束的強(qiáng)烈照射,不變形不升華;
(4)切片能夠適當(dāng)被染色,保證一定的反差;
(5)切片均勻,無皺褶、刀痕,無染色劑或其他化學(xué)物質(zhì)的沉淀。
目地和要求
(1)新鮮。(材料離體后1-5 min內(nèi)進(jìn)入固定液,避免細(xì)胞自溶和結(jié)構(gòu)變化)
(2)體積小。(厚度<1 mm,長度寬度均<5 mm,固定液滲透能力有限,組織太大會(huì)導(dǎo)致無法固定充分)
(3)機(jī)械損傷小。(動(dòng)作輕巧,器械鋒利,避免對組織的擠壓和推拉,建議用剃須刀片、手術(shù)刀片、手術(shù)剪刀。)
(4)低溫操作,器械、容器、固定液均需預(yù)冷(降低酶的活性,減少組織自溶)。
(5)取材部位準(zhǔn)確,且注意材料的方向性和定位。
目的和要求:終止組織細(xì)胞的生化過程同時(shí)把它們的超微結(jié)構(gòu)改變控制在最小范圍內(nèi),并保護(hù)這些結(jié)構(gòu)在后續(xù)的脫水、包埋等過程中不被破壞;將蛋白、離子等內(nèi)容物保留在原位,以便后續(xù)的研究。
(1)破壞細(xì)胞的酶活性系統(tǒng)
(2)穩(wěn)定細(xì)胞物質(zhì)成分,并保存之
(3)接近細(xì)胞生活狀態(tài)的滲透壓,使細(xì)胞不收縮或膨脹
(4)在組分的分子之間建立交聯(lián),提供骨架穩(wěn)定細(xì)胞器的空間構(gòu)型
(5)提供一定的電子反差
戊二醛(C5H8O2):滲透性好,保存蛋白質(zhì)、酶活性,穩(wěn)定糖元,無電子染色作用,固定脂類和膜差。可長時(shí)固定(低溫可達(dá)半年)。
鋨酸(OsO4):強(qiáng)氧化劑,固定脂類、膜結(jié)構(gòu),有電子染色作用;破壞酶活性。
多聚甲醛:優(yōu)良地保存酶活性,用于細(xì)胞化學(xué)。
緩沖液:仿效細(xì)胞外液成分,對細(xì)胞富有生理保護(hù)。維持穩(wěn)定的pH值;提供適當(dāng)?shù)臐B透壓;提供適當(dāng)?shù)碾x子成分使樣品不抽提,不沉淀。
1.pH值:動(dòng)物組織7.2-7.4,植物6.8-7.0,高度含水組織8.0-8.4
2.緩沖液類型:磷酸緩沖液、緩沖液等,0.05-0.1 mol/L
3.滲透壓:KCl, NaCl, 蔗糖調(diào)節(jié)
4.固定劑濃度:戊二醛2-6%等
5.材料大?。?.5-1 mm3
操作步驟:
戊二醛固定液:有細(xì)胞壁的樣品5%,無細(xì)胞壁樣品3%。加入緩沖體系,確保生物樣本內(nèi)外滲透壓,避免細(xì)胞縮小或吸漲。
30%→50%→70%→80%→90%→95%(以上步驟每次15-20 min)→100%(2-3次,每次15 min)→100%丙酮(20 min)
常用Epon 812、Spurr、LR white等
可手工、機(jī)械修塊。
醋酸鈾:主要染核酸、核蛋白、細(xì)胞核、結(jié)締組織。要避光,有微弱的放射性
檸檬酸鉛:主要染膜結(jié)構(gòu)、脂類、核酸。易與CO2反應(yīng)成沉淀,染色中應(yīng)避免。
步驟:單染:鉛鹽單染,鈾鹽單染。
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