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透射電鏡樣品制備技術(shù)之生物樣品制備流程

來源:廣州領(lǐng)拓儀器科技有限公司   2023年10月30日 11:13  
透射電鏡樣品制備技術(shù)之生物樣品制備流程

透射電鏡常用的50-100 kV電子束來說,樣品的厚度控制在10~100 nm為宜。由于電鏡產(chǎn)生的電子束穿透能力很弱,需要把標(biāo)本切成厚度小于0.1 µm以下的薄片才適用,這種薄片稱為超薄切片(Ultrathin sectioning)。常用的超薄切片厚度是50-70 nm,也可進(jìn)行冷凍超薄切片。

超薄切片技術(shù)是為透射電子顯微鏡觀察提供薄樣品的專門技術(shù),研究材料類、生物類樣品的基本技術(shù),尤其是觀察細(xì)胞、組織、器官等的超微結(jié)構(gòu)以及亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)常用的技術(shù)。也是電鏡細(xì)胞化學(xué)、免疫電鏡等技術(shù)的關(guān)鍵性技術(shù)。它在生物學(xué)的發(fā)展過程中占據(jù)重要的地位,目前各種細(xì)胞、組織的超微結(jié)構(gòu)知識(shí)幾乎都是由它提供的。

圖片

冷凍超薄切片機(jī) Leica EM UC7

制備流程

取材→固定→脫水→包埋(滲透、包埋、聚合)→超薄切片→電子染色(生物類)

取材→清洗→包埋(滲透、包埋、聚合)→超薄切片→電子染色(材料類)

生物樣品超薄切片要求:

(1)細(xì)胞的細(xì)微結(jié)構(gòu)保存良好,沒有明顯的物質(zhì)凝聚、丟失、添加等人工效應(yīng);

(2)切片厚度50-100 nm為宜:太薄反差低;太厚反差好,但結(jié)構(gòu)重疊,電子束不能穿透;

(3)切片應(yīng)耐電子束的強(qiáng)烈照射,不變形不升華;

(4)切片能夠適當(dāng)被染色,保證一定的反差;

(5)切片均勻,無皺褶、刀痕,無染色劑或其他化學(xué)物質(zhì)的沉淀。

取材

目地和要求

(1)新鮮。(材料離體后1-5 min內(nèi)進(jìn)入固定液,避免細(xì)胞自溶和結(jié)構(gòu)變化)

(2)體積小。(厚度<1 mm,長度寬度均<5 mm,固定液滲透能力有限,組織太大會(huì)導(dǎo)致無法固定充分)

(3)機(jī)械損傷小。(動(dòng)作輕巧,器械鋒利,避免對組織的擠壓和推拉,建議用剃須刀片、手術(shù)刀片、手術(shù)剪刀。)

(4)低溫操作,器械、容器、固定液均需預(yù)冷(降低酶的活性,減少組織自溶)。

(5)取材部位準(zhǔn)確,且注意材料的方向性和定位。

目的和要求:終止組織細(xì)胞的生化過程同時(shí)把它們的超微結(jié)構(gòu)改變控制在最小范圍內(nèi),并保護(hù)這些結(jié)構(gòu)在后續(xù)的脫水、包埋等過程中不被破壞;將蛋白、離子等內(nèi)容物保留在原位,以便后續(xù)的研究。

固定液:固定劑+緩沖液

(1)破壞細(xì)胞的酶活性系統(tǒng)

(2)穩(wěn)定細(xì)胞物質(zhì)成分,并保存之

(3)接近細(xì)胞生活狀態(tài)的滲透壓,使細(xì)胞不收縮或膨脹

(4)在組分的分子之間建立交聯(lián),提供骨架穩(wěn)定細(xì)胞器的空間構(gòu)型

(5)提供一定的電子反差

固定劑:

戊二醛(C5H8O2):滲透性好,保存蛋白質(zhì)、酶活性,穩(wěn)定糖元,無電子染色作用,固定脂類和膜差。可長時(shí)固定(低溫可達(dá)半年)。

鋨酸(OsO4):強(qiáng)氧化劑,固定脂類、膜結(jié)構(gòu),有電子染色作用;破壞酶活性。

多聚甲醛:優(yōu)良地保存酶活性,用于細(xì)胞化學(xué)。

緩沖液:仿效細(xì)胞外液成分,對細(xì)胞富有生理保護(hù)。維持穩(wěn)定的pH值;提供適當(dāng)?shù)臐B透壓;提供適當(dāng)?shù)碾x子成分使樣品不抽提,不沉淀。

固定方法:常用雙固定法,用戊二醛對樣品前固定,漂洗后使用鋨酸對樣品進(jìn)行后固定。
影響因素:

    1.pH值:動(dòng)物組織7.2-7.4,植物6.8-7.0,高度含水組織8.0-8.4

    2.緩沖液類型:磷酸緩沖液、緩沖液等,0.05-0.1 mol/L

    3.滲透壓:KCl, NaCl, 蔗糖調(diào)節(jié)

    4.固定劑濃度:戊二醛2-6%等

    5.材料大?。?.5-1 mm3

操作步驟:

戊二醛固定液:有細(xì)胞壁的樣品5%,無細(xì)胞壁樣品3%。加入緩沖體系,確保生物樣本內(nèi)外滲透壓,避免細(xì)胞縮小或吸漲。

切取一小塊組織,置入預(yù)冷的戊二醛固定液(3-5%)中,4℃預(yù)固定20分鐘后,撈出置于潔凈的保鮮膜或培養(yǎng)皿上(已滴有預(yù)冷的固定液),在固定液中用將組織切成2-5 mm長, 2-3 mm寬, 1 mm厚的細(xì)條,移入盛有預(yù)冷的戊二醛固定液的離心管中,4 ℃固定過夜。
1.植物細(xì)胞的細(xì)胞壁和液泡會(huì)阻礙固定液迅速滲入。植物材料內(nèi)部存有的空氣,往往使材料漂浮于固定液面之上,由此影響到植物組織的固定效果。組織放入戊二醛固定液后,可用真空泵抽出組織內(nèi)部的氣體,使材料沉入固定液中。
2.動(dòng)物樣本的取材,可將動(dòng)物麻醉或急性處死后切取組織?;蛘卟捎迷还潭?、流灌固定后再切取所需組織。
3.細(xì)胞培養(yǎng)的樣品,輕微并短暫離心,倒凈培養(yǎng)液后,加入預(yù)冷的固定液,4℃固定10 min后,低溫6000 rpm/min離心5 min(離心力不可過大,離心時(shí)間不可過長,避免機(jī)械擠壓),去上清,滴加新鮮固定液并重懸,4℃固定過夜。
脫水
用適當(dāng)?shù)挠袡C(jī)溶劑取代組織和細(xì)胞中的游離態(tài)水分,使之能與包埋劑混合。
要求:脫水;更換液體動(dòng)作要迅速;脫水時(shí)間不宜過長;固定后的樣品要充分漂洗。
脫水劑:乙醇、丙酮、環(huán)氧丙烷等。
步驟:逐級梯度脫水

30%→50%→70%→80%→90%→95%(以上步驟每次15-20 min)→100%(2-3次,每次15 min)→100%丙酮(20 min) 

包埋
1.滲透:用包埋劑或混合液逐漸取代組織內(nèi)的脫水劑(或前介質(zhì)),使細(xì)胞內(nèi)外所有的空隙被滲透液填充,使包埋劑逐步滲透到組織細(xì)胞內(nèi)部,以便與細(xì)胞外的包埋劑同時(shí)聚合。
包埋劑:聚合有良好的切割性能,軟硬度易調(diào)節(jié)粘度低,易滲透;溶于脫水劑;電子透明度好,并具有一定的反差,聚合要充分、均勻,聚合溫度要盡可能低;本身無結(jié)構(gòu),熱穩(wěn)定性好,可耐電子束轟擊;來源豐富,且各批號性能盡可能一致;切片易染色,且對人體無害。

常用Epon 812、Spurr、LR white等

步驟:逐級梯度滲透,脫水劑:包埋劑3:1 → 1:1 → 1:3 →純包埋劑
2.包埋:將滲透好的樣品塊放入到適當(dāng)?shù)陌衲>咧校嘌b上純包埋劑包埋。
3.聚合:加溫聚合形成固體基質(zhì),牢固地支撐整個(gè)細(xì)胞結(jié)構(gòu)或組織,制成適于機(jī)械切割的固體包埋塊,利于切片。
步驟:37℃(12 h)→45 ℃(12-48 h)→60 ℃(24-48 h)
超薄切片
制刀:常用玻璃刀、鉆石刀。刀上要裝水槽,并注入槽液。
槽液要求:不與材料發(fā)生化學(xué)反應(yīng),干凈無雜質(zhì);液面與刀口基本平行;低粘度,蒸發(fā)量小;有一定的表面張力,有利于漂浮切片。
常用的槽液:雙蒸水、二甲基亞砜(DMSO)、甘油水溶液等。
修塊:除去組織周圍多余的包埋介質(zhì)和不感興趣的部分,以提供較大的有效觀察面積。并修成一定形狀、大小的包埋塊截面,便于連續(xù)切片。

可手工、機(jī)械修塊。

切片:裝塊→裝刀→對刀→加水→切片→撈片
注意事項(xiàng):對刀是關(guān)鍵;槽液用新鮮溶液;溫度20~25℃,相對濕度60%;室內(nèi)無空氣流動(dòng),清潔,防止震動(dòng);刀槽密封,否則漏水。
電子染色
利用高密度的重金屬染色劑(鉛、鈾)與細(xì)胞某些微細(xì)結(jié)構(gòu)或成分結(jié)合,以增加樣品局部的電子散射能力,提高電鏡圖像反差的方法。
染色實(shí)質(zhì)上是增大電子密度,電鏡圖像灰度不同。電子顯微鏡圖片均為黑白灰,無彩色。
常用染色劑:

醋酸鈾:主要染核酸、核蛋白、細(xì)胞核、結(jié)締組織。要避光,有微弱的放射性

檸檬酸鉛:主要染膜結(jié)構(gòu)、脂類、核酸。易與CO2反應(yīng)成沉淀,染色中應(yīng)避免。

步驟:單染:鉛鹽單染,鈾鹽單染。

雙染色:醋酸雙氧鈾染色→漂洗→檸檬酸鉛染色→漂洗→干燥。雙染色較為常用。
材料樣品取材后可用丙酮清洗樣品表面,直接包埋(滲透、包埋、聚合),超薄切片、電子染色(鋨酸熏染)。



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