CD5外套層細(xì)胞淋巴瘤標(biāo)記抗體

廣州健侖生物科技有限公司

CD5 是一種跨膜糖蛋白，其作為受體在 T細(xì)胞增殖的調(diào)節(jié)中發(fā)揮作用。主要分布 95%的胸腺細(xì)胞和72%的外周血淋巴細(xì)胞。正常淋巴結(jié)中，CD5 主要分布在 T 細(xì)胞區(qū)。多數(shù) T 細(xì)胞淋巴瘤、套細(xì)胞淋巴瘤、慢性B 細(xì)胞白血病呈陽(yáng)性表達(dá)，但其它類(lèi)型的淋巴瘤呈陰性反應(yīng)（如濾泡型淋巴瘤、大細(xì)胞淋巴瘤等）。CD5 聯(lián)合 CD10、CD23、CyclinD1 研究套細(xì)胞淋巴瘤是非常有用的〔套細(xì)胞淋巴瘤中 CD10、CD23 (－),CD5、CyclinD1(＋)〕。

我司還提供其它進(jìn)口或國(guó)產(chǎn)試劑盒：登革熱、瘧疾、流感、A鏈球菌、合胞病毒、腮病毒、乙腦、寨卡、黃熱病、基孔肯雅熱、克錐蟲(chóng)病、違禁品濫用、肺炎球菌、軍團(tuán)菌、化妝品檢測(cè)、食品安全檢測(cè)等試劑盒以及日本生研細(xì)菌分型診斷血清、德國(guó)SiFin診斷血清、丹麥SSI診斷血清等產(chǎn)品。

歡迎咨詢(xún)

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【產(chǎn)品介紹】

細(xì)胞定位：細(xì)胞膜

克隆號(hào)：SP19

同型：IgG

適用組織：石蠟/冰凍

陽(yáng)性對(duì)照：扁桃體

抗原修復(fù)：熱修復(fù)（EDTA）

抗體孵育時(shí)間：30-60min

CD5外套層細(xì)胞淋巴瘤標(biāo)記抗體

二、細(xì)胞轉(zhuǎn)染
1. 轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備
① 將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。
② 震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存，使用前還需震蕩。
2. 選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來(lái)轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在一個(gè)轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無(wú)血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑，再次震蕩。
3. 將混合液在室溫放置10―15分鐘。
4. 吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無(wú)血清培養(yǎng)基清洗一次。
5. 加入混合液，將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個(gè)小時(shí)。
6. 到時(shí)后，根據(jù)細(xì)胞種類(lèi)決定是否移除混合液，之后加入*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時(shí)。
三、第二次細(xì)胞傳代
1. 在轉(zhuǎn)染后24小時(shí)，觀(guān)察實(shí)驗(yàn)結(jié)果并記錄綠色熒光蛋白表達(dá)情況。
2. 再次進(jìn)行細(xì)胞傳代，按照免疫染色合適的密度0.8X105個(gè)細(xì)胞/35mm培養(yǎng)皿將細(xì)胞重新轉(zhuǎn)入培養(yǎng)皿中。
3. 在正常條件下培養(yǎng)24小時(shí)后按照染色要求條件固定。
原理：
細(xì)胞傷口愈合實(shí)驗(yàn)被研究者廣泛應(yīng)用和改進(jìn)，用來(lái)研究各種實(shí)驗(yàn)條件比如基因敲除和化療在細(xì)胞遷移和增殖中的作用。該實(shí)驗(yàn)操作簡(jiǎn)單，費(fèi)用廉價(jià)，實(shí)驗(yàn)條件容易根據(jù)不同的目的改進(jìn)。該方法的基本原理是，在單層培養(yǎng)細(xì)胞間制作劃痕以產(chǎn)生愈傷區(qū)域，然后監(jiān)控該傷口周?chē)?xì)胞的向劃痕遷移的現(xiàn)象，即傷口愈合。改變細(xì)胞遷移和/或生長(zhǎng)的因素可以增加或降低傷口愈合率。該方法可以定量，適用于自動(dòng)化系統(tǒng)高通量篩選。

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Second, cell transfection
1. Transfection reagent preparation
① 400ul nuclease water added to the tube, shock 10 seconds, dissolved fat.
② After the shock on the reagent stored at -20 degrees Celsius, need to be shocked before use.
2. Select the appropriate mixing ratio (1: 1-1: 2 / liposome volume: DNA quality) to transfected cells. Add a suitable volume of serum-free medium to one transfer tube. Add appropriate amount of MyoD or EGFP DNA, shake and add appropriate volume of transfection reagent, shake again.
3. Place the mixture at room temperature for 10-15 minutes.
4. Aspirate the medium from the plate and wash once with PBS or serum-free medium.
5. Add the mixture and put the cells back into the incubator and incubate for one hour.
6. By the time, depending on cell type to decide whether to remove the mixture, then add complete medium for 24-48 hours.
Third, the second cell passage
1. 24 hours after transfection, observe the experimental results and record the expression of green fluorescent protein.
2. Repeat the passage of cells and reintroduce the cells into Petri dishes according to the appropriate immunostaining density of 0.8 × 10 5 cells / 35 mm dish.
3. Under normal conditions for 24 hours after dyeing in accordance with the requirements of fixed conditions.
principle:
Cell wound healing experiments are widely used and improved by researchers to study the role of various experimental conditions such as gene knockdown and chemotherapy in cell migration and proliferation. The experimental operation is simple, inexpensive, experimental conditions easy to improve for different purposes. The basic principle of this method is to make a scratch between monolayer cultured cells to create a callus area and then monitor the phenomenon of cell migration to the scratch, that is, wound healing. Factors that alter cell migration and / or growth can increase or decrease the rate of wound healing. The method can be quantitative, suitable for high-throughput screening of automated systems.