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FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

來源:QUANTUM量子科學儀器貿(mào)易(北京)有限公司   2025年03月31日 17:25  

亮點聚焦


 1.高通量測量:FluidFM OMNIUM系統(tǒng)能夠在每小時測量多達50個哺乳動物細胞的粘附力,顯著提升了單細胞力譜的通量。

 2.廣泛的力學范圍:FluidFM技術(shù)能夠測量高達3µN的粘附力,遠超傳統(tǒng)的力學范圍。

 3.全自動化流程:從細胞抓取、力-距離曲線測量到細胞釋放和清洗,整個過程實現(xiàn)全自動化,確保數(shù)據(jù)的一致性和可重復性。

 4.高效數(shù)據(jù)分析:系統(tǒng)自動生成每個細胞的力-距離曲線,便于快速比較不同細胞群體的粘附力,助力細胞粘附機制的研究。

 


FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

 

引言


細胞粘附在組織形成、維持和功能中扮演著至關(guān)重要的角色。細胞間的相互作用通過跨膜蛋白復合物(如鈣粘蛋白和整合素)介導,這些復合物不僅維持著細胞的連接,還在癌癥生物學中影響腫瘤的發(fā)生和轉(zhuǎn)移,并將促進新型靶向療法的開發(fā)。因此,量化活細胞粘附力對于理解細胞黏附的生理機制至關(guān)重要。


傳統(tǒng)的單細胞力譜(SCFS)技術(shù)依賴于原子力顯微鏡(AFM),雖然能夠精確測量活細胞粘附強度,但其通量低、操作復雜、且需要繁瑣的細胞固定步驟。FluidFM技術(shù)的引入改變了這一局面,它不僅消除了對細胞涂層和功能化的需求,還大幅提高了測量通量和力學范圍(可高達3 µN)。


傳統(tǒng)SCFSFluidFM的比較


傳統(tǒng)單細胞力譜(SCFS


傳統(tǒng)SCFS通過將細胞固定在AFM懸臂上,測量細胞與基地之間的粘附力。盡管該方法能夠提供準確力-距離曲線,但其通量極低,每天僅能測量幾個細胞。此外,細胞固定過程非常耗時且需要豐富的經(jīng)驗,限制了其在高通量研究中的應用。


FluidFM技術(shù)


FluidFM技術(shù)通過微流體探針實現(xiàn)了對貼壁細胞的自動化抓取和釋放,無需復雜的細胞固定步驟。微吸管通過施加負壓即可輕松拾取貼壁細胞,并在測量后自動釋放細胞,整個過程實現(xiàn)全自動化[1-8]。這一創(chuàng)新不僅顯著提高了通量,還擴展了可檢測的力學范圍,最高可達3 µN


FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)- FluidFM OMNIUM


FluidFM OMNIUM系統(tǒng)的全自動化工作流程


FluidFM OMNIUM系統(tǒng)將單細胞力譜提升到了全新的水平。整個抓取貼壁細胞、使其與表面分離、測量力-距離曲線、釋放細胞以及清洗步驟的過程在FluidFM OMNIUM儀器上全自動化。系統(tǒng)允許在6-24孔板格式中每小時測量多達50個細胞,整個過程無需人工干預。下文案例我們將展示使用新型自動化SCFS工作流程對100個哺乳動物細胞(CHOHeLa)進行的粘附力測量。


FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

1. 使用FluidFM OMNIUM測量哺乳動物細胞粘附力的自動化單細胞力譜(SCFS)工作流程。通過Arya軟件手動指向并點擊細胞來完成細胞選擇。整個工作流程——包括抓取貼壁細胞、將其從表面分離、測量力-距離曲線,以及隨后的清洗微吸管步驟——均實現(xiàn)全自動化。


實驗設置與結(jié)果


在本研究中,作者使用FluidFM OMNIUM系統(tǒng)對CHOHeLa細胞的粘附力進行了測量。細胞在12孔板的兩個單獨孔中過夜粘附。細胞以70%匯合度接種在含有10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素/鏈霉素的DMEM-F12培養(yǎng)基中,在37°C5% CO2條件下培養(yǎng)。孵育后,用DPBS洗滌孔,并將培養(yǎng)基更換為1毫升無CO2L15培養(yǎng)基。然后將板放入FluidFM OMNIUM系統(tǒng)的樣品支架中,并保持恒定37°C。


在選擇細胞和定義分離參數(shù)后,整個實驗自動進行。目標細胞以預定速度接近懸臂,然后施加負壓,隨后懸臂回縮,使貼壁細胞從板表面分離。達到預設回縮距離后,樣品臺將懸臂移動到包含洗滌溶液的系列孔中,釋放細胞并清洗微吸管。


使用FluidFM OMNIUM中預編程的軟件模塊,自動測量了100條力-距離曲線,分別來自HeLaCHO細胞群體。每次運行50個細胞的時間如圖2所示,對于HeLaCHO細胞均如此。顯然,在兩種情況下,長尾分布中均存在一個單峰,這與先前文獻[3]相符。在兩種情況下,都發(fā)現(xiàn)了一小部分粘附力非常強的細胞,其粘附力是群體平均值的數(shù)倍。兩種細胞類型的粘附力范圍大致相同,從約100 nN2500 nN。同時,HeLa群體分布的峰值向更高的粘附力方向移動。因此,如果我們匯總所有粘附力值,會發(fā)現(xiàn)顯著差異(p<0.05,雙尾t檢驗)。更重要的是,我們獲得了具有統(tǒng)計意義的數(shù)據(jù)量,使我們能夠確定雖然HeLa細胞的平均粘附力更高,但兩種類型的細胞均可在100-2500 nN范圍內(nèi)找到。


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2. HeLa細胞和CHO細胞群體中單個細胞粘附力的百分比分布


結(jié)論


FluidFM是一項成熟的技術(shù),擁有100多篇同行評審的出版物,已被廣泛用于多種應用領(lǐng)域,如植入式生物材料[9]、防污表面[10]或癌癥研究[4]?,F(xiàn)在,SCFS已在FluidFM OMNIUM系統(tǒng)上實現(xiàn)自動化,以更高的通量執(zhí)行單細胞力譜?,F(xiàn)在可以在僅一個實驗日內(nèi)處理具有統(tǒng)計意義的細胞數(shù)量,從而為每個單個細胞生成力-距離曲線。每次運行最多可處理50個細胞,不到2小時即可完成,確保了自動化拾取在允許自然細胞遷移的細胞培養(yǎng)條件下的細胞。與傳統(tǒng)的SCFS相比,這提高了數(shù)量級的通量。使用FluidFM,可檢測力范圍也得到了顯著提高。


本研究展示了群體中單個細胞的分布,并證明了在具有統(tǒng)計意義的規(guī)模上執(zhí)行SCFS的必要性。通過這種新的自動化SCFS工作流程,可比較數(shù)百個細胞/條件下直接測量力的群體分布。此外,采樣更多數(shù)量的細胞內(nèi)群體可提高粘附力分布的分辨率,進而可以支持細胞亞群的數(shù)據(jù)分層或簡單達到統(tǒng)計意義。在本研究中,我們展示了如何在半天內(nèi)的工作時間內(nèi),以統(tǒng)計顯著性比較CHO細胞與HeLa細胞的粘附力。

FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

FluidFM技術(shù)概覽


FluidFM是一項創(chuàng)新性的技術(shù),它具有集成力學反饋的微流體探針(圖3),可非常溫和地自動化操縱單個細胞。該技術(shù)結(jié)合了原子力顯微鏡和納米流體學,為單細胞應用等提供了一個通用的液體輸送系統(tǒng)。


FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

3. 圖中紅色激光對施加力的提供反饋數(shù)據(jù)。


FluidFM探針具有不同的頂端形狀和尺寸(圖4),解鎖了多種創(chuàng)新研究可能性。

 

Nanosyringe以其金字塔形的尖端和極為鋒利的頂點設計而成,能夠溫和地穿透任何類型的細胞。它可用于將任何種類的可溶性化合物(如DNA、蛋白質(zhì)、藥物等)遞送到細胞內(nèi),或者從單個細胞中提取胞質(zhì)溶膠或核內(nèi)容物,同時保持細胞的高存活率。

 

Micropipettes帶有扁平尖端的微量移液管特別適合拾取和放置物體,包括細胞。其孔徑大小從2微米到8微米不等,特別適合用于拾取哺乳動物細胞。

 

Nanopipettes在金字塔形尖端的頂點處設有一個300納米的孔徑,旨在實現(xiàn)精確的液體分配,從而能夠在亞微米級別繪制圖案,或者精確刺激細胞培養(yǎng)中的單個細胞。


FluidFM重塑單細胞力譜,實現(xiàn)通量與精度雙飛躍,全自動智能化變革方案!

4. FluidFM探針配備有各種形狀和大小的尖端,每個尖端都解鎖了特殊的研究可能性。


FluidFM OMNIUM是一個高度集成且直觀的系統(tǒng),具有簡單的制備步驟以及廣泛的自動化和觀察功能。該系統(tǒng)簡單易用,配備了全封閉細胞培養(yǎng)箱,實現(xiàn)了從簡單制備到廣泛自動化和觀察功能的全面整合。


近期,多功能單細胞顯微操作技術(shù)- FluidFM,連續(xù)發(fā)表三篇[11-13]重要論文堪稱重磅之作。這些研究成果不僅展示了FluidFM技術(shù)在多個前沿領(lǐng)域的廣泛應用潛力,還進一步推動了相關(guān)領(lǐng)域的發(fā)展。


參考文獻

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Liu X, Min Q, Cheng X, Zhang W, Wu Q, Chen X, Lv M, Liu S, Zhao H, Yang D, Tai Y, Lei X, Wang Y, Zhan Q. (2024) Quiescent cancer cells induced by high-density cultivation reveals cholesterol-mediated survival and lung metastatic traits. British Journal of Cancer.

 

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